基本原理 先用随机引物将 RNA 反转录成 cDNA,然后设计特异性的引物和荧光探针(TaqMan 探针),进行 荧光定量 PCR 检测。TaqMan 探针是一种寡核苷酸探针,它设计为与目标序列上游引物和下游引物 之间的序列配对。荧光基团连接在探针的 5’末端,而淬灭剂则在 3’末端。当完整的探针与目 标序列配对时,荧光基团发射的荧光因与 3’端的淬灭剂接近而被淬灭,但在进行延伸反应时, qTaq 聚合酶的 5’外切酶活性将探针进行酶切,使得荧光基团与淬灭剂分离,荧光强度得到检测。 随着扩增循环数的增加,释放出来的荧光基团不断积累,因此荧光强度与扩增产物的数量呈正比关系。
引物量:每条引物的浓度0.1~1umol或10~100pmol,以*引物量产生所需要的结果为好,引物浓度偏高会引起错配和非特异性扩增,且可增加引物之间形成二聚体的机会。
注意事项:
1. 试剂盒各组份使用前请充分融化并摇匀,离心管内的试剂需离心数秒后使用。 2 PCR操作各阶段应在不同实验室进行。
3 在试剂和标本准备阶段使用负压超净台。
4 应穿工作服,戴一次性手套(经常替换手套),使用一次性用品。
5 PCR操作人员应具有经验和受过培训。
6操作过程中用到的超净台、移液器、离心机、扩增仪等仪器设备应经常用10%次氯酸或70%乙醇或 紫外灯处理。
7 阳性对照应和待检标本平行进行操作后方可进行PCR扩增。